Unidad(es) Académica(s) o Sede Administrativa:
Grupo de investigacion: Laboratorio de Estudios Parasitológicos
Responsable: Plaza, Dana
Integrantes:
Área de aplicación:
Subárea de aplicación:
Servicios de I+D:
- Ensayos de eficacia de productos antiparasitarios.
- Asesoramiento sobre metodología diagnóstica, terapéutica y/o profilaxis.
- Diseño de ensayos.
- Diagnóstico parasitológico.
- Cursos de capacitación en diagnóstico parasitológico y/o enfermedades parasitarias.
Tipo de servicios:
Línea de Investigacion:
Nuestro trabajo se enfoca en el diagnóstico de enfermedades parasitarias en general, ya sea para la clínica diaria o para animales de producción. Con los resultados obtenidos ayudamos a los colegas en la toma de decisiones sobre tratamientos o acciones tendientes a mejorar la producción y la salud. También trabajamos con las enfermedades zoonóticas de mayor importancia en el área de influencia de la FCV, con el principal objetivo de preservar "la salud". Los resultados obtenidos nos permiten asesorar y acompañar a colegas en múltiples aspectos relacionados con las enfermedades parasitarias.
Diagnóstico de endo y ecto parasitosis en distintas especies animales.
Diagnóstico:
- de parásitos gastrointestinales y pulmonares: Método de Graham, Método simple, Mc Master modificado, Método de Willis, Método combinado de Teuscher, Método de Ritchie modificado, Método de sedimentación 532, Diagnóstico de Criptosporidium spp con Coloración de Ziehl- Neelsen modificada, Método de Baermann, Cultivo de larvas, Lavado de pasto.
- de hemoparásitos: Gota fresca, Frotis, Gota gruesa, Microhematocrito, Improntas, Método de Knott modificado.
- de parásitos del tracto urinario.
- de parásitos de la piel: Raspado de piel, Frotis del canal auricular: permite la observación de ácaros que se ubican dentro del canal auricular, Impresión con cinta de acetato, Concentración de ácaros.
- Digestión Artificial (método aprobado por SENASA para el diagnóstico de triquinelosis).
- Punción con aguja fina en tejidos sólidos (P.A.F.).
- Raspado de tejidos.
- Kalazar Detect para diagnóstico de leishmaniosis.
- Método de Mayer para identificación de quistes hidatídicos.
- Recuperación de parásitos del tracto gastrointestinal (cuajar, intestino delgado, intestino grueso, hígado) para identificación y cuantificación de la carga de especímenes adultos e inmaduros.
- Digestión de cuajar para recuperación, identificación y cuantificación de la carga de larvas en hipobiosis.
- Recuperación de parásito del tracto respiratorio para recuperación, identificación y cuantificación de la carga de especímenes adultos e inmaduros.
- Determinaciones taxonómicas de endoparásitos (nematodes, cestodes, trematodes, pentastomídeos y/o acantocéfalos).
- Determinaciones taxonómicas de ectoparásitos (distintos tipos de artrópodos).
- TRCH: test de reducción del conteo de huevos para el diagnóstico de resistencia a los antiparasitarios.
Recursos disponibles:
Contamos con un laboratorio equipado para realizar diagnóstico parasitológico directo, tanto de endo como de ectoparásitos y diagnóstico de Triquinelosis mediante digestión artificial.
Laboratorio equipado con:
- Microscopios ópticos binoculares, doble cabezal Olympus.
- Lupas Esteromicroscópicas.
- Estufas de cultivo y de esterilización.
- PCs e impresora.
- Cámara capturadora de imágenes digitales.
- Heladeras con freezer (-) 20º C.
- Bioterio de Mus musculus, cepa Balb-C. Mantenimiento de cepa de Trichinella spiralis (aprobación CAES N°405/18).
-Colección de Helmintos y Artrópodos.
Clientes y colaboradores:
Palabras clave
